Научный журнал ФГБУН ВолНЦ РАН
(сетевое издание)
RuEn

рубрика "Кормопроизводство, кормление сельскохозяйственных животных и технология кормов"

Потенциал бактерий рода Pseudomonas для использования в растениеводстве

Рассохина И.И.

Том 7, №3, 2024

Рассохина И.И. Потенциал бактерий рода Pseudomonas для использования в растениеводстве // АгроЗооТехника. Т. 7. № 3. DOI: 10.15838/alt.2024.7.3.3 URL: http://azt-journal.ru/article/30027

DOI: 10.15838/alt.2024.7.3.3

Аннотация   |   Авторы   |   Список литературы
  1. Акимова Е.Е., Терещенко Н.Н., Зюбанова Т.И. [и др.] (2018). Влияние бактерий рода Pseudomonas на активность пероксидазы в растениях пшеницы при инфицировании Bipolaris sorokiniana // Физиология растений. Т. 65. № 5. С. 366–375.
  2. Гринева И.А., Кулешова Ю.М., Ломоносова В.А. [и др.] (2017). Индукция устойчивости у растений рапса к засолению элиситорами – производными бактерий родов Pseudomonas и Bacillus // Журнал Белорусского гос. ун-та. Биология. № 1. С. 38–43.
  3. Жардецкий С.С., Путинская А.Я., Храмцова Е.А. (2005). Ростостимулирующая активность мутантного штамма бактерий Pseudomonas mendocina // Вестник БГУ. Сер. 2: Химия. Биология. География. С. 32–35.
  4. Жардецкий С.С., Храмцова Е.А. (2018). Влияние ИУК-продуцирующего штамма Pseudomonas mendocina 9-40 на стрессоустойчивость растений // Биологически активные препараты для растениеводства. Научное обоснование – рекомендации – практические результаты: мат-лы XIV Междунар. науч.-практ. конф. С. 75–77.
  5. Иванов В.А. (2023). Стратегия развития сельского хозяйства Европейского Севера России / отв. ред. В.Н. Лаженцев; Мин-во науки и высшего образования РФ, Коми научный центр УрО РАН, Институт социально-экономических и энергетических проблем Севера. Сыктывкар: Принт. 139 с.
  6. Кузьмина Л.Ю., Гуватова З.Г., Ионина В.И. [и др.] (2016). Мобилизация ортофосфата кальция бактериями родов Advenella и Pseudomonas // Вестник защиты растений. № 89 (3). С. 90–91.
  7. Кулешова Ю.М., Камаева М.В., Максимова Н.П. (2006). Получение бактерий Pseudomonas putida КМБУ 4308, способных к сверхпродукции пигмента пиовердина Рm // Вестник Белорусского гос. ун-та. Сер. 2: Химия. Биология. География. № 2. С. 48–52.
  8. Кулешова Ю.М., Максимова Н.П., Блажевич О.В., Семак И.В. (2006). Идентификация и характеристика пиовердина pm – нового антирадикального соединения, синтезируемого бактериями Pseudomonas putida КМБУ 4308 // Труды Белорусского гос. ун-та. Вып. 1. С. 89–97.
  9. Кулешова Ю.М., Рыбакова В.А., Феклистова И.Н. [и др.] (2017). Принципы отбора стимуляторов корнеобразования растений среди бактерий Pseudomonas с антагонистической активностью // Журнал Белорусского гос. ун-та. Биология. № 3. С. 54–62.
  10. Максимов И.В., Абизгильдина Р.Р., Пусенкова Л.И. (2011). Стимулирующие рост растений микроорганизмы как альтернатива химическим средствам защиты от патогенов // Прикладная биохимия и микробиология. Т. 47. № 4. С. 373–385.
  11. Рассохина И.И., Маракаев О.А. (2023). Оценка морфофизиологических параметров и продуктивности обыкновенного ячменя (Hordeum vulgare L.) при действии суспензии штамма Pseudomonas sp. GEOT18 // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Естественные науки. № 3 (43). С. 92–104. DOI: 10.21685/2307-9150-2023-3-8
  12. Рассохина И.И., Платонов А.В. (2023). Действие суспензии штамма Pseudomonas sp. GEOT18 на рост и продуктивность ячменя обыкновенного сорта Сонет // Вестник аграрной науки. № 6 (105). С. 50–55. DOI: 10.17238/issn2587-666X.2023.6.50
  13. Рассохина И.И., Платонов А.В., Маракаев О.А., Зайцева Ю.В. (2020). Эффективность инокуляции семян овса посевного штаммом Pseudomonas sp. GEOT18, перспективным для создания биопрепарата // Международный сельскохозяйственный журнал. № 5 (377). С. 52–55. DOI: 10.24411/2587-6740-2020-15093
  14. Рассохина И.И., Платонов А.В., Платонов А.А. (2022). Действие бактерий рода Pseudomonas sp. на рост и продуктивность тритикале // Вестник КрасГАУ. № 1 (178). С. 93–99. DOI: 10.36718/1819-4036-2022-1-93-99
  15. Сырмолот О.В., Кочева Н.С. (2019). Оценка влияния бактерий родов Bacillus и Pseudomonas на продуктивность сои // Международный научно-исследовательский журнал. № 10–2 (88). DOI: 10.23670/IRJ.2019.88.10.02
  16. Феклистова И.Н., Максимова Н.П. (2008). Синтез пирролнитрина бактериями Pseudomonas aurantiaca B-162 // Труды Белорусского государственного университета. Т. 3. С. 148–155.
  17. Феклистова И.Н., Максимова Н.П. (2009). Гиббереллины бактерий Pseudomonas aurantiaca: биологическая активность, подходы к получению и использованию продуцентов фитогормонов // Труды Белорусского государственного университета. Т. 4. № 1.
  18. Bychkova A.A., Zaitseva Y.V., Sidorov A.V., Aleksandrova A.S., Marakaev O.A. (2022). Biotechnological potential of phosphate-solubilizing Pseudomonas migulae strain GEOT18. International Journal of Agricultural Technology, 18 (4), 1403–1414.
  19. Chen Y.P., Rekha P.D., Arun A.B. [et al.] (2006). Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities. Applied Soil Ecology, 34, 33–41. DOI: 10.1016/j.apsoil.2005.12.002
  20. Choi O., Kim J., Kim J.G. [et al.] (2008). Pyrroloquinoline quinone is a plant growth promotion factor produced by Pseudomonas fluorescens B16. Plant physiology, 146 (2), 657–668. DOI: 10.1104/pp.107.112748
  21. Chu T.N., Tran B.T.H., Van Bui L., Hoang M.T.T. (2019). Plant growth-promoting rhizobacterium Pseudomonas PS01 induces salt tolerance in Arabidopsis thaliana. BMC research notes, 12 (1), 11. DOI: 10.1186/s13104-019-4046-1
  22. Dorjey S., Dolkar D., Sharma R. (2017). Plant growth promoting rhizobacteria Pseudomonas: A review. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 7 (6), 1335–1344. DOI: 10.20546/ijcmas.2017.607.160
  23. Dubeikovsky A.N., Mordukhova E.A., Kochetkov V.T., Polikarpova F.Y., Boronin A.M. (1993). Growth promotion of blackcurrant softwood cuttings by recombinant strain Pseudomonas fluorescens BSP53a synthesizing an increased amount of indole-3-acetic acid. Soil biology and Biochemistry, 25 (9), 1277–1281. DOI: 10.1016/0038-0717(93)90225-Z
  24. Feklistova I.N., Maksimova N.P. (2008). Obtaining Pseudomonas aurantiaca strains capable of overproduction of phenazine antibiotics. Microbiology, 77 (2), 176–180.
  25. Gull M., Hafeez F.Y. (2012). Characterization of siderophore producing bacterial strain Pseudomonas fluorescens Mst 8.2 as plant growth promoting and biocontrol agent in wheat. African Journal of Microbiology Research, 6 (33), 6308–6318. DOI: 10.5897/AJMR12.1285
  26. Heng J.L.S., Zainual N.S.M. (2017). Effect of encapsulated Pseudomonas putida strain PF1P on plant growth and its microbial ecosystem. African Journal of Biotechnology, 16 (41), 2009–2013. DOI: 10.5897/AJB2017.16164
  27. Huang Z., Bonsall R.F., Mavrodi D.V., Weller D.M., Thomashow L.S. (2014). Transformation of Pseudomonas fluorescens with genes for biosynthesis of phenazine-1-carboxylic acid improves biocontrol of rhizoctonia root rot and in situ antibiotic production. FEMS Microbiology Ecology, 49 (2), 243–251. DOI: 10.1016/j.femsec.2004.03.010
  28. Jain R., Pandey A. (2016). A phenazine-1-carboxylic acid producing polyextremophilic Pseudomonas chlororaphis (MCC2693) strain, isolated from mountain ecosystem, possesses biocontrol and plant growth promotion abilities. Microbiological research, 190, 63–71. DOI: 10.1016/j.micres.2016.04.017
  29. Kim J., Choi O., Kang J.H. [et al.] (1998). Tracing of some root colonizing Pseudomonas in the rhizosphere using lux gene introduced bacteria. Korean Journal of Plant Pathology, 14, 13–18.
  30. Kumar A., Verma H., Singh V.K. [et al.] (2017). Role of Pseudomonas sp. in sustainable agriculture and disease management. Agriculturally Important Microbes for Sustainable Agriculture, 2, 195–215. DOI: 10.1007/978-981-10-5343-6_7
  31. Kumari P., Meena M., Gupta P. [et al.] (2018). Plant growth promoting rhizobacteria and their biopriming for growth promotion in mung bean (Vigna radiata (L.) R. Wilczek). Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 16, 163–171. DOI: 10.1016/j.bcab.2018.07.030
  32. Misra H.S., Khairnar N.P., Barik A. [et al.] (2004). Pyrroloquinoline-quinone: A reactive oxygen species scavenger in bacteria. FEBS letters, 578, 26–30. DOI: 10.1016/j.febslet.2004.10.061
  33. Prabhukarthikeyan S.R., Keerthana U., Raguchander T. (2018). Antibiotic-producing Pseudomonas fluorescens mediates rhizome rot disease resistance and promotes plant growth in turmeric plants. Microbiological Research, 210, 65–73. DOI: 10.1016/j.micres.2018.03.009
  34. Safronova V.I., Stepanok V.V., Engqvist G.L., Alekseyev Y.V., Belimov A.A. (2006). Root-associated bacteria containing 1-aminocyclopropane-1-carboxyate deaminase improve growth and nutrient uptake by pea genotypes cultivated in cadmium supplemented soil. Biology and Fertility of Soils, 42, 267–272. DOI: 10.1007/s00374-005-0024-y
  35. Sah S., Krishnani S., Singh R. (2021). Pseudomonas mediated nutritional and growth promotional activities for sustainable food security. Current Research in Microbial Sciences, 2, 100084. DOI: 10.1016/j.crmicr.2021.100084
  36. Singh P., Singh R.K., Guo D.-J. [et al.] (2021). Whole genome analysis of sugarcane root-associated endophyte Pseudomonas aeruginosa B18-A plant growth-promoting bacterium with antagonistic potential against Sporisorium scitamineum. Frontiers in Microbiology, 12, 628376. DOI: 10.3389/fmicb.2021.628376
  37. Singh P., Singh R.K., Zhou Y. [et al.] (2022). Unlocking the strength of plant growth promoting Pseudomonas in improving crop productivity in normal and challenging environments: A review. Journal of Plant Interactions, 17 (1), 220–238. DOI: 10.1080/17429145.2022.2029963
  38. Tiwari P., Singh J.S. (2017). A plant growth promoting rhizospheric Pseudomonas aeruginosa strain inhibits seed germination in Triticum aestivum (L) and Zea mays (L). Microbiology Research, 8 (2), 7233. DOI: 10.4081/mr.2017.7233
  39. Uzair B., Kausar R., Bano S.A. [et al.] (2018). Isolation and molecular characterization of a model antagonistic Pseudomonas aeruginosa divulging in vitro plant growth promoting characteristics. BioMed Research International, 1–7. DOI: 10.1155/2018/6147380
  40. Van Peer R., Niemann G.J., Schippers B. (1991). Induced resistance and phytoalexin accumulation in biological control of Fusarium wilt of carnation by Pseudomonas sp. strain WCS 417. Phytopathology, 81, 728–734.
  41. Vansuyt G., Robin A., Briat J.F., Curie C., Lemanceau P. (2007). Iron acquisition from Fe-pyoverdine by Arabidopsis thaliana. Molecular Plant-Microbe Interactions, 20 (4), 441–447. DOI: 10.1094/MPMI-20-4-0441
  42. Vyas P., Gulati A. (2009). Organic acid production in vitro and plant growth promotion in maize under controlled environment by phosphate-solubilizing fluorescent Pseudomonas. BMC microbiology, 9, 1–15. DOI: 10.1186/1471-2180-9-174
  43. Xie H., Pasternak J.J., Glick B.R. (1996). Isolation and characterization of mutants of the plant growth-promoting rhizobacteria Pseudomonas putida GR12-2 that overproduce indoleacetic acid. Current Microbiology, 32, 67–71. DOI: 10.1007/s002849900012
  44. Zia R., Nawaz M.S., Siddique M.J., Hakim S., Imran A. (2020). Plant survival under drought stress: implications, adaptive responses, and integrated rhizosphere management strategy for stress mitigation. Microbiology Research, 242, 126626. DOI: 10.1016/j.micres.2020.126626

Полная версия статьи